Click to order
Ваш заказ
Total: 
Имя и Фамилия
Электронная почта
Телефон
экспериментальная медицина
тезисы
Угнетение репродукции вируса простого герпеса 1-го типа пробиотическими бактериями в системе in vitro
Авторы Е. И. Ермоленко, В. А. Фураева, А. Н. Суворов (все – ГУ НИИ экспериментальной медицины РАМН), В. А. Исаков, Д. К. Ермоленко (все – НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Пастера, Санкт-Петербург)

Опубликовано Журнал «Вопросы вирусологии», №4, 2010

Штамм кисломолочных бактерий Enterococcus faecium L3 обладает выраженным антибактериальным и противовирусным действием. Противовирусный эффект доказан в эксперименте на культуре простого герпеса (ВГП-1). По противовирусному эффекту штамм Enterococcus faecium L3 превосходит другие пробиотические штаммы.
Цитопатическое действие вирусов простого герпеса 1-го типа (ВПГ-1), культивирующихся на культуре клеток Vero без какого-либо воздействия или в присутствии супернатантов штаммов Enterococcus faecium L3, Lactobacillus plantarum 8A-P3 и Escherichia coli M17, было исследовано при помощи световой и иммунофлюоресцентной микроскопии. Влияние пробиотических штаммов оценивали, определяя процент измененных клеток и инфекционную дозу вируса. Супернатанты культур Lactobacillus sp. и Enterococcus sp. в отличие от E. coli обладали антивирусной активностью. Ингибирование репродукции вируса было выражено в большей степени при добавлении супернатантов до инфицирования культуры клеток ВПГ-1. Максимальную антивирусную активность проявили супернатант энтерококков и полученный из него пептидный экстракт. Это может быть связано с продукцией этим штаммом бактериоцинов и бактериоциноподобных субстанций.
Литература
1
Баринский И. Ф., Чешик С. Г. Инфекции, вызванные вирусами человека простого герпеса 1-го и 2-го типов // Медицинская вирусология: Руководство / Под ред. Д. К. Львова. — М., 2008. — С. 412—432.
2
Ермоленко Е. И., Черныш А. Ю., Берлов М. Н. и др. Антагонистическая активность энтерококков в отношении Streptococcus pyogenes // Вестн. Санкт-Петербургского ун-та. — 2008. — № 1. — С. 18—25.
3
Banasaz M., Norin E., Holma R., Midtved T. Increased enterocite production in gnotobiotic rats monoassociated with Lactobacillus rhamnosus GG // Appl. Environ. Microbiol. — 2002. — Vol. 68. — P. 3031—3034.
4
Cinatl J. J., Cinatl J., Rabenau H., Gumbel H. et al. In vitro anti-human immunodeficiency activity of 2’,3’-dideoxynucleotides and their effect on clonal growth of hemopoietic cells from human bone marrow // Arzneimittelforschung. — 1993. — Bd 43, N 5. — S. 622—625.
5
Daher K., Selsted M. E., Lehrer R. I. Direct inactivation of viruses by human granulocyte defensins // J. Virol. — 1986. — Vol. 60. — P. 1068—1074.
6
Hampl H., Schlehofer J. R., Habermehl K. O. Differences in the morphology of herpes simplex virus infected cells. II Type specific virus membrane alterations of HSV-1 and HSV-2 infected cells // Med. Microbiol. Immunol. — 1981. — Vol. 169, N 3. — P. 209—223.
7
Kaila M., Isolauri E., Arvilommmi H., Vesikari T. Viable versus inactivated Lactobacillus strain GG in acute rotavirus diarrhea // Arch. Dis. Childh. — 1995. — Vol. 72, N 1. — P. 43—51.
8
Klebanoff S. J., Belding M. E. Virucidal activity of H2O2-generating bacteria: requirement for peroxidase and a halide // J. Infect. Dis. — 1974. — Vol. 129, N 3. — P. 345—348.
9
Klebanoff S. J., Coombs R. W. Virucidal effect of Lactobacillus acidophilus on human immunodeficiency virus type 1: possible role in heteroxesual transmission // J. Exp. Med. — 1991. — Vol. 174. — P. 289—292.
10
Klebanoff S., Watts D. H., Mehlin C., Headley C. M. Lactobacilli and vaginal host defense: activation of the human immunodeficiency virus type 1 long terminal repeat, cytokine production, a NF-kB // J. Infect. Dis. — 1999. — Vol. 179. — P. 653—660.
11
Lehrer R. I., Daher K., Ganz T., Selsted M. E. Direct inactivation of viruses by MCP-1 and MCP-2, natural peptide antibiotics from rabbit leucocytes // J. Virol. — 1985. — Vol. 54. — N 2. — P. 467—472.
12
Majamaa H., Isolauri E., Saxelin M., Vesikari T. Lactic acid bacteria in the treatment of cute rotavirus gastroenteritis // J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. — 1995. — Vol. 20, N 3. — P. 333—338.
13
Ohashi T., Minamishima Y., Yokokura T., Mutai M. Induction of resistance in mice against murine cytomegalovirus by cellular components of Lactobacillus casei // Biotherapy. — 1989. — Vol. 1, N 2. — P. 89—95.
14
Rosenthal K. S., Killius J., Hodnichak C. M. et al. Mild acidic pH inhibition of the major pathway of herpes simplex virus entry into HEp-2 cells // J. Gen. Virol. — 1989. — Vol. 70, N 4. — P. 857—867.
15
Klebanoff S. J., Watts D. H., Mehlin C., Headley C. M. Lactobacillus and vaginal host defense: activation of the human immunodeficiency virus type 1 long terminal repeat, cytokine production, and NF-kB // J. Infect. Dis. — 1999. — Vol. 179. — P. 653—660.
16
Yasin B., Wang W., Pang M. et al. Theta defensins protect cells from infection by herpes simplex virus by inhibiting viral adhesion and entry // J. Virol. — 2004. — Vol. 78, N 10. — P. 5147—5156.
17
Yasui H., Kiyoshima J., Hori T., Shida K. Protection against influenza virus infection of mice fed Bifidobacterium breve YIT4064 // Clin. Diagn. Lab. Immunol. — 1999. — Vol. 6, N 2. — P. 186—192.
18
Waschmann M. B., Farias M. E., Takeda E., Sesma F. et al. Antiviral activity of enterocin CRL35 aginst herpes viruses // J. Antimicrob. Agents. — 1999. — Vol. 12. — P. 293—299.
19
Waschmann M. B., Castilla V., Holgado A. P. et al. Enterocin CRL35 inhibits late stages of HSV-1 and HSV-2 replication // Antiviral Res. — 2003. — Vol. 58, N 1. — P. 17—24.